- Forschung
- Karriere
- Aktuelles
- Institut
- Durchsuchen
- Spachumstellung
- Leichte Sprache
„”
Das bisher Unsichtbare bringen wir zum Leuchten und machen es für die Forschung sichtbar. Unsere Expertise ist die Entwicklung von synthetischen, perfekt angepassten, leuchtenden Fluoreszenzfarbstoffen für die Mikroskopie. Wir denken in und verfolgen unkonventionelle Wege in Design und Synthese von Farbstoffen für „High-Definition“-Bildaufnahmen in lebenden Zellen.
Sonden für die Markierung von Kompartimenten
In einer dynamischen zellulären Umgebung bewegen sich Proteine und befinden sich in verschiedenen Kompartimenten. Dementsprechend müssen Wege gefunden werden, um dieselben Proteine unterschiedlich zu markieren, wenn sie sich nicht am selben Ort befinden. Indem das SNAP-Tag-Substrat BG auf seine sulfonierte Version SBG umgestaltet wird, werden die Fluorophore mit einer undurchlässigen Abgangsgruppe versehen. Neben der besseren Löslichkeit ist keine Untersuchung der Ladung erforderlich, da sie unberührt bleibt; daher kann jedes beliebige Fluorophor eingesetzt werden, um nur den oberflächenexponierten Pool eines Proteins zu markieren. Um dies für ein Mitglied jeder Klasse von G-Protein-gekoppelten Rezeptoren (GPCR) zu demonstrieren, haben wir hochauflösende Mikroskopie, Proteinverfolgung des Umsatzes und Stöchiometriemessungen verschiedener Rezeptorpools durchgeführt.
Markierung endogener Proteine
Durch das Anbringen von Fluorophoren an peptidische Antagonisten von GLP1R, einem Protein, das an der Glukosehomöostase und der Appetitregulierung beteiligt ist, haben wir diesen Rezeptor in seiner nativen Umgebung mit einem Farbstoff ausgestattet. Auf diese Weise können wir genau beobachten, wo er sich in der Zelle befindet, was sich auf das Verständnis der Proteindynamik und die Erzeugung spezifischer Marker für differenzierte Stammzellen auswirkt.
Photokontrolle von GPCRs
G-Protein-gekoppelte Rezeptoren sind Zelloberflächenproteine, die Reize außerhalb der Zelle wahrnehmen und diese in eine intrazelluläre Reaktion umsetzen. Obwohl sie das größte Angriffsziel für Medikamente darstellen, sind der Aktivierungsmechanismus und das feine Zusammenspiel nur teilweise verstanden. Durch die Kombination von photoschaltbaren Molekülen mit Protein-Engineering sind wir in der Lage, Licht mit seiner einzigartigen räumlichen und zeitlichen Auflösung zu nutzen, um metabotrope Glutamatrezeptoren, die eine Schlüsselrolle bei Gesundheit und Krankheit im Nervensystem spielen, fernzusteuern und präzise zu kontrollieren. Kürzlich wurde zum ersten Mal eine quantitative Wirksamkeit erreicht, indem wir die Valenz unserer Lichtschalter erhöhten - ein chemischer Trick, der auch für andere Ziele geeignet sein könnte.
Bei den LUXendins handelt es sich um antagonistische, mit Fluorophoren fusionierte Peptide gegen den Glucagon-like Peptide-1-Rezeptor (GLP1R), einen GPCR der Klasse B, der an der Glukosehomöostase beteiligt ist und ein Blockbuster-Medikamentenziel darstellt. Mit unseren verschiedenen verfügbaren Farben (LUXendin555, LUXendin645 und LUXendin651) können wir diesen Rezeptor in lebenden Zellen und Gewebe sichtbar machen, verfolgen und untersuchen. Di ...
MARKIERUNG ENDOGENER PROTEINE
Es gibt verschiedene Techniken zur Markierung von Proteinen, von denen einige gentechnische Verfahren erfordern. Unser Ziel ist es, endogene Proteine mit Hilfe der Mikroskopie sichtbar zu machen, um mehr über ihre Lokalisierung und ihr Verhalten zu erfahren. Dies wird durch die sorgfältige Entwicklung spezifischer Sonden erreicht, die aus chemisch an einen geeigneten Marker fusionierten festen Bindern bestehen. Auf ...
Die Photopharmakologie ist eine leistungsfähige Methode zur Beeinflussung biologischer Funktionen mit der räumlich-zeitlichen Auflösung, die Licht bietet. Dies wird erreicht, indem Pharmakophore mit einer auf Licht reagierenden chemischen Gruppe ausgestattet werden. Dieser Ansatz hat bereits eine Vielzahl von Biomolekülen hervorgebracht, die als Ziel dienen können. Wir wollen nun Wege finden, um diese Methode durch den Einsatz von Nanokörpern in ...
CHEMISCHE SYNTHESE
"Ein Rundkolben wurde mit .... beladen" Wir nutzen die Möglichkeiten der organischen Chemie für Moleküle zur Feinabstimmung der pharmakologischen Eigenschaften, indem wir die Selektivität von Subtypen für Proteinfamilien oder die Signalverzerrung für die zelluläre Kommunikation einführen.
DEUTERIERTE RHODAMINE
Wir entwickeln und verwenden "d12"-Deuterium-Kongenere von Rhodaminen, die im Vergleich zu ihren Ausgangsfluorophoren TMR und SiR eine höhere Helligkeit und längere Lebensdauer bei geringerem Ausbleichen aufweisen. Werfen Sie einen Blick auf den verbesserten Förster-Resonanz-Energietransfer (FRET), die fluoreszenzaktivierte Zellsortierung (FACS), die Fluoreszenz-Lebensdauer-Mikroskopie (FLIM) und die Nanoskopie mit stimulie ...
Die Photopharmakologie ist eine leistungsfähige Methode zur Beeinflussung biologischer Funktionen mit der räumlich-zeitlichen Auflösung, die Licht bietet. Dies wird erreicht, indem Pharmakophore mit einer auf Licht reagierenden chemischen Gruppe ausgestattet werden. Dieser Ansatz hat bereits eine Vielzahl von Biomolekülen hervorgebracht, die als Ziel dienen können. Wir wollen nun Wege finden, um diese Methode durch den Einsatz von Nanokörpern in ...
Personen
Nach seinem Chemiestudium in Erlangen und einem einjährigen Aufenthalt in der Weck-Gruppe an der NYU machte JB 2010 seinen Abschluss im Labor von Ivana Ivanovic-Burmazovic. Sein Interesse an Biologie führte ihn in das Labor von Dirk Trauner an der LMU München, wo er 2014 promovierte und seine Arbeit mit Kai Johnsson zunächst an der EPFL und dann am Max-Planck-Institut für medizinische Forschung in Heidelberg fortsetzte. Seit 2020 ist er am FMP als Juniorgruppenleiter im Bereich Chemische Biologie tätig.
Blaise studierte Chemie an der Universität Paris-Saclay und an der ENS Paris-Saclay. Im Jahr 2020 promovierte er in Chemischer Biologie unter der Leitung von Dominique Urban (ICMMO) und Boris Vauzeilles (ICSN). Anschließend arbeitete er mit Pierre-Yves Renard und Ludovic Jean im COBRA Lab in Rouen. Im Jahr 2023 wechselte er nach Berlin in die Gruppe von Sigrid Milles und in das Labor von JB, um an innovativen Markierungsstrategien für hochauflösende spektroskopische Techniken zu arbeiten.
Laura studierte Toxikologie an der Charité - Universitätsmedizin Berlin und forschte im Rahmen ihres Masterstudiums bei Joëlle Rüegg am Karolinska Institut in Stockholm. Anschließend kehrte sie nach Berlin zurück, um in der Gruppe von Martin Witzenrath in Infektiologie zu promovieren, wobei sie sich auf die durch Lungenentzündung hervorgerufene Lungenbarrierestörung konzentrierte. Im Jahr 2024 wechselte sie in das Labor von JB, um an Betazellersatz und -schutz bei Typ-1-Diabetes zu arbeiten.
Song studierte organische Chemie und machte seinen Master of Science unter der Leitung von Prof. Bin Tan und Prof. Shaoyu Li an der Southern University of Science and Technology (SUSTech) in China. Danach entwickelte er ein Interesse an chemischer Biologie, was ihn zu einem zweijährigen Aufenthalt in Lausanne führte. Im Oktober 2024 begann er seine Doktorarbeit am FMP mit JB, um deuterierte, photogeschaltete Sonden zu untersuchen.
Ramona studierte Biologie mit den Schwerpunkten Genetik und Molekularbiologie an der Humboldt-Universität zu Berlin erhielt 2010 ihren Abschluss in Molekularer Ökologie. Nach einer Station bei der WITA GmbH kam sie 2011 als Technische Assistentin zum FMP und arbeitete dort im Bereich Molekulare Zellphysiologie und Massenspektrometrie. Im Jahr 2020 stieß sie zum Broichhagen-Labor, um dort die Aufgaben in der Chemischen Biologie zu unterstützen und weiterzuverfolgen. Sie genießt die Natur und ist in ihrer Freizeit eine leidenschaftliche Wanderin.